嘉峪检测网 2025-03-10 08:08
导读:本文介绍了EMSA电泳迁移率变动实验方法与注意事项。
1. 实验原理
电泳迁移率变动实验(Electrophoretic Mobility Shift Assay法,简称EMSA)是一种用于检测蛋白质与DNA或RNA之间相互作用的技术。通过该实验可以确定特定的蛋白质是否能够结合到目标DNA或RNA序列,并且可以进一步研究这些相互作用的特性,如特异性、亲和力以及影响因素等。
图片来源:https://images.app.goo.gl/HZtMtbT3T4WwQWQAA
2. 实验材料
2.1 试剂
标记探针:生物素(Biotin)或放射性(如γ-32P)标记的双链DNA探针(例如NF-κB结合位点:5'-AGTTGAGGGGACTTTCCCAGGC-3')。
结合缓冲液:10 mM HEPES (pH 7.9), 50 mM KCl, 1 mM DTT, 0.5 mM EDTA, 5%甘油,0.1% NP-40。
竞争性探针:100×过量未标记野生型或突变型探针。
非变性聚丙烯酰胺凝胶:6%丙烯酰胺(29:1丙烯酰胺:甲叉双丙烯酰胺),0.5×TBE缓冲液。
2.2 仪器与耗材
垂直电泳槽(如Bio-Rad Mini-PROTEAN系统)
转膜装置(若使用生物素标记)
化学发光成像仪(如GE Amersham Imager 600)
预冷离心机、微量移液器、硅烷化EP管
3. 实验步骤
3.1 探针制备与标记
双链探针退火:
合成互补单链DNA(各10 μM),95℃加热5 min,缓慢冷却至室温。
生物素标记:使用Biotin 3' End DNA Labeling Kit(Thermo Fisher)进行末端标记。
3.2 蛋白-DNA结合反应
反应体系(20 μL):
标记探针:1 μL(终浓度10 nM)
核蛋白提取物:5 μg(推荐BCA法测定浓度)
结合缓冲液:10 μL
Poly(dI-dC):1 μL(1 μg/μL,抑制非特异性结合)
竞争性探针(可选):1 μL(100×过量)
孵育条件:室温(25℃)避光孵育20 min。
3.3 非变性凝胶电泳
制胶:配制6%非变性聚丙烯酰胺凝胶(厚度1 mm),预电泳30 min(100 V,4℃)。
上样:加入10 μL结合反应液与2 μL 6×Loading Buffer(含甘油)。
电泳条件:4℃下100 V电泳1.5-2 h(溴酚蓝迁移至胶底端)。
3.4 转膜与检测(生物素标记)
转膜:将凝胶转至尼龙膜(0.45 μm),380 mA恒流转膜30 min。
交联:UV交联120 mJ/cm²。
显色:
链霉亲和素-HRP孵育30 min。
化学发光底物(ECL)显影,成像分析。
图片来源:https://en.wikipedia.org/wiki/Electrophoretic_mobility_shift_assay
4. 注意事项与常见问题
4.1 关键操作规范
探针设计:避免探针内部形成二级结构,推荐使用在线工具(如IDT OligoAnalyzer)验证。
蛋白活性:核提取物需分装保存于-80℃,避免反复冻融(活性下降>50%需弃用)。
温度控制:结合反应与电泳需在低温(4℃)下进行,防止复合物解离。
4.2 常见问题与解决方案
参考文献:
Hellman, L. M. & Fried, M. G. (2007). "Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA) for Detecting Protein-Nucleic Acid Interactions". Nature Protocols.
Thermo Fisher Scientific (2021). Biotin 3' End DNA Labeling Kit Protocol.
Carey, J. & Smale, S. T. (2000). Electrophoretic Mobility Shift Assay. Cold Spring Harbor Protocols.
Bradford, M. M. (1976). "A Rapid and Sensitive Method for Protein Quantitation". Analytical Biochemistry.
来源:实验老司机煲仔饭
关键词: EMSA电泳迁移率变动实验